2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 معياري مادا جيڪي نسبتي ماليڪيولر ماس ورڇ جي ڪيليبريشن وکر ۾ استعمال ٿين ٿا: انسولين، مائيڪوپيپٽائڊس، گلائسين-گلائسين-ٽائروسائن-آرجينائن، گلائسين-گلائسين-گلائسين
3 اوزار ۽ سامان
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
مجموعي طور تي، سسٽار جي شين ۾ امينو ايسڊ جو تناسب زينپرو جي شين کان وڌيڪ آهي.
حصو 8 استعمال جا اثر
دير سان ڏيڻ واري عرصي ۾ مرغين جي پيداوار جي ڪارڪردگي ۽ آنا ڏيڻ واري معيار تي ٽريس منرلز جي مختلف ذريعن جا اثر.
پيداوار جو عمل
ٽارگيٽيڊ چيليشن ٽيڪنالاجي
شيئر ايملسيفڪيشن ٽيڪنالاجي
پريشر اسپري ۽ خشڪ ڪرڻ واري ٽيڪنالاجي
ريفريجريشن ۽ ڊيهوميڊيشن ٽيڪنالاجي
ترقي يافته ماحولياتي ڪنٽرول ٽيڪنالاجي
ضميمه الف: پيپٽائڊس جي نسبتي ماليڪيولر ماس ورڇ جي تعين لاءِ طريقا
معيار کي اپنائڻ: GB/T 22492-2008
1 ٽيسٽ اصول:
اهو اعليٰ ڪارڪردگي واري جيل فلٽريشن ڪروميٽوگرافي ذريعي طئي ڪيو ويو. يعني، 220nm جي الٽراوائليٽ جذب موج جي پيپٽائيڊ بانڊ تي علحدگي لاءِ نموني جي اجزاء جي نسبتي ماليڪيولر ماس سائيز ۾ فرق جي بنياد تي، پورس فلر کي اسٽيشنري فيز طور استعمال ڪندي، جيل فلٽريشن ڪروميٽوگرافي (يعني، GPC سافٽ ويئر) ذريعي نسبتي ماليڪيولر ماس ورهائڻ جي تعين لاءِ وقف ٿيل ڊيٽا پروسيسنگ سافٽ ويئر استعمال ڪندي، ڪروميٽوگرام ۽ انهن جي ڊيٽا کي پروسيس ڪيو ويو، سويابين پيپٽائيڊ جي نسبتي ماليڪيولر ماس جي سائيز ۽ ورهائڻ جي حد حاصل ڪرڻ لاءِ حساب ڪيو ويو.
2. ريجنٽس
تجرباتي پاڻي کي GB/T6682 ۾ ثانوي پاڻي جي وضاحتن کي پورو ڪرڻ گهرجي، ري ايجنٽس جو استعمال، خاص شرطن کان سواءِ، تجزياتي طور تي خالص آهن.
2.1 ري ايجنٽس ۾ ايسٽونائيٽرائيل (ڪروميٽوگرافڪ طور تي خالص)، ٽرائي فلورواسيٽڪ ايسڊ (ڪروميٽوگرافڪ طور تي خالص)، شامل آهن.
2.2 معياري مادا جيڪي نسبتي ماليڪيولر ماس ورڇ جي ڪيليبريشن وکر ۾ استعمال ٿين ٿا: انسولين، مائيڪوپيپٽائڊس، گلائسين-گلائسين-ٽائروسائن-آرجينائن، گلائسين-گلائسين-گلائسين
3 اوزار ۽ سامان
3.1 هاءِ پرفارمنس لڪوئيڊ ڪروميٽوگراف (HPLC): هڪ ڪروميٽوگرافڪ ورڪ اسٽيشن يا انٽيگريٽر جنهن ۾ يو وي ڊيڪٽر ۽ GPC ڊيٽا پروسيسنگ سافٽ ويئر آهي.
3.2 موبائل فيز ويڪيوم فلٽريشن ۽ ڊيگاسنگ يونٽ.
3.3 اليڪٽرانڪ بيلنس: گريجوئيٽ ويليو 0.000 1 گرام.
4 آپريٽنگ مرحلا
4.1 ڪروميٽوگرافڪ حالتون ۽ سسٽم موافقت جا تجربا (حوالو حالتون)
- 4.1.1 ڪروميٽوگرافڪ ڪالم: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (اندروني قطر) يا ساڳئي قسم جا ٻيا جيل ڪالم جيڪي پروٽين ۽ پيپٽائڊس جي تعين لاءِ موزون ڪارڪردگي سان.
- 4.1.2 موبائل مرحلو: ايسٽونائيٽريل + پاڻي + ٽرائي فلورواسيٽڪ ايسڊ = 20 + 80 + 0.1.
- 4.1.3 ڳولا جي موج جي ڊيگهه: 220 nm.
- 4.1.4 وهڪري جي شرح: 0.5 ايم ايل/منٽ.
- 4.1.5 ڳولڻ جو وقت: 30 منٽ.
- 4.1.6 نموني انجيڪشن جو مقدار: 20μL.
- 4.1.7 ڪالمن جو گرمي پد: ڪمري جو گرمي پد.
- 4.1.8 ڪروميٽوگرافڪ سسٽم کي ڳولڻ جي گهرجن کي پورو ڪرڻ لاءِ، اهو طئي ڪيو ويو هو ته مٿي ڏنل ڪروميٽوگرافڪ حالتن ۾، جيل ڪروميٽوگرافڪ ڪالم جي ڪارڪردگي، يعني، پليٽن جو نظرياتي تعداد (N)، ٽرائپٽائڊ معيار (گلائسين-گلائسين-گلائسين) جي چوٽي جي بنياد تي 10000 کان گهٽ نه هوندو.
- 4.2 لاڳاپيل ماليڪيولر ماس معياري وکر جي پيداوار
- مٿي ڏنل مختلف نسبتي ماليڪيولر ماس پيپٽائڊ معياري حل 1 mg / mL جي ماس ڪنسنٽريشن سان موبائل فيز ميچنگ ذريعي تيار ڪيا ويا، هڪ خاص تناسب ۾ ملايا ويا، ۽ پوءِ 0.2 μm ~ 0.5 μm جي پور سائيز سان هڪ نامياتي مرحلي جھلي ذريعي فلٽر ڪيا ويا ۽ نموني ۾ داخل ڪيا ويا، ۽ پوءِ معيارن جا ڪروميٽوگرام حاصل ڪيا ويا. نسبتي ماليڪيولر ماس ڪيليبريشن وکر ۽ انهن جي مساواتن کي برقرار رکڻ جي وقت جي خلاف نسبتي ماليڪيولر ماس جي لوگارٿم کي پلاٽ ڪندي يا لڪير ريگريشن ذريعي حاصل ڪيو ويو.
4.3 نموني علاج
10mL جي واليوميٽرڪ فلاسڪ ۾ 10mg نموني جو صحيح وزن ڪريو، ٿورو موبائل فيز شامل ڪريو، 10 منٽن لاءِ الٽراسونڪ شيڪنگ ڪريو، ته جيئن نمونو مڪمل طور تي حل ٿي وڃي ۽ ملايو وڃي، موبائل فيز سان اسڪيل تي ملائي، ۽ پوءِ 0.2μm~0.5μm جي سوراخ جي سائيز سان هڪ نامياتي فيز جھلي ذريعي فلٽر ڪيو وڃي، ۽ فلٽريٽ جو تجزيو A.4.1 ۾ ڪروميٽوگرافڪ حالتن مطابق ڪيو ويو.
- 5. لاڳاپيل ماليڪيولر ماس ورڇ جو حساب
- 4.3 ۾ تيار ڪيل نموني حل جو تجزيو ڪرڻ کان پوءِ 4.1 جي ڪروميٽوگرافڪ حالتن هيٺ، نموني جي لاڳاپي ماليڪيولر ماس ۽ ان جي ورڇ جي حد کي GPC ڊيٽا پروسيسنگ سافٽ ويئر سان ڪيليبريشن وکر 4.2 ۾ نموني جي ڪروميٽوگرافڪ ڊيٽا کي متبادل بڻائي حاصل ڪري سگهجي ٿو. مختلف پيپٽائڊس جي لاڳاپي ماليڪيولر ماس جي ورڇ کي چوٽي واري علائقي جي نارملائيزيشن طريقي سان حساب ڪري سگهجي ٿو، فارمولا مطابق: X=A/A ڪل×100
- فارمولا ۾: X - نموني ۾ ڪل پيپٽائيڊ ۾ هڪ نسبتي ماليڪيولر ماس پيپٽائيڊ جو ماس فريڪشن، %؛
- الف - هڪ نسبتي ماليڪيولر ماس پيپٽائڊ جو چوٽي وارو علائقو؛
- ڪُل A - هر هڪ لاڳاپيل ماليڪيولر ماس پيپٽائڊ جي چوٽي وارن علائقن جو مجموعو، هڪ ڏهائي جڳهه تي حساب ڪيو ويو آهي.
- 6 ورجائي سگهڻ
- ورجائي جي حالتن هيٺ حاصل ڪيل ٻن آزاد تعين جي وچ ۾ مطلق فرق ٻنهي تعين جي رياضي جي اوسط جي 15٪ کان وڌيڪ نه هوندو.
- ضميمو ب: مفت امينو ايسڊ جي تعين جا طريقا
- معيار کي اپنائڻ: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 ريجنٽ ۽ مواد
- گليشيل ايسٽڪ ايسڊ: تجزياتي طور تي خالص
- پرڪلورڪ ايسڊ: 0.0500 mol/L
- اشارو: 0.1٪ ڪرسٽل واڱڻائي اشارو (گليشيل ايسٽڪ ايسڊ)
- 2. مفت امينو ايسڊ جو تعين
نمونن کي 80 ° C تي 1 ڪلاڪ لاءِ خشڪ ڪيو ويو.
نموني کي خشڪ ڪنٽينر ۾ رکو ته جيئن قدرتي طور تي ڪمري جي حرارت تي ٿڌو ٿئي يا استعمال لائق درجه حرارت تي ٿڌو ٿئي.250 ايم ايل خشڪ مخروطي فلاسڪ ۾ تقريبن 0.1 گرام نموني (0.001 گرام تائين صحيح) وزن ڪريو.نموني کي ماحول جي نمي جذب ڪرڻ کان بچائڻ لاءِ جلدي ايندڙ قدم تي اڳتي وڌو.25 ايم ايل گليشيل ايسٽڪ ايسڊ شامل ڪريو ۽ 5 منٽن کان وڌيڪ نه چڱي طرح ملايو.ڪرسٽل وايوليٽ انڊيڪيٽر جا 2 ڦڙا شامل ڪريوپرڪلورڪ ايسڊ جي 0.0500 mol / L (±0.001) معياري ٽائيٽريشن محلول سان ٽائيٽريٽ ڪريو جيستائين محلول جامني کان آخري نقطي تائين تبديل نه ٿئي.
استعمال ٿيل معياري محلول جي مقدار کي رڪارڊ ڪريو.
- ساڳئي وقت خالي ٽيسٽ ڪريو.
- 3. حساب ۽ نتيجا
- ري ايجنٽ ۾ آزاد امينو ايسڊ مواد X کي ماس فريڪشن (%) جي طور تي ظاهر ڪيو ويندو آهي ۽ فارمولا جي مطابق حساب ڪيو ويندو آهي: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%، tne فارمولا ۾:
- ج - معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول جو ڪنسنٽريشن في ليٽر مولز ۾ (مول/ليٽر)
- V1 - معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول سان نمونن جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ حجم، ملي ليٽر (mL) ۾.
- Vo - معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول سان ٽائيٽريشن بلينڪ لاءِ استعمال ٿيندڙ حجم، ملي ليٽر (mL) ۾؛
M - نموني جو ماس، گرام (g) ۾.
| 0.1445: امينو ايسڊ جو سراسري وزن 1.00 ايم ايل معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول جي برابر آهي [c (HClO4) = 1.000 mol / L]. | 4.2.3 سيريم سلفيٽ معياري ٽائيٽريشن محلول: ڪنسنٽريشن c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L، GB/T601 مطابق تيار ڪيل. | |
| معيارن کي اپنائڻ: Q/70920556 71-2024 | 1. تعين جو اصول (مثال طور Fe) | امينو ايسڊ آئرن ڪمپليڪس ۾ اينهائيڊروس ايٿانول ۾ تمام گهٽ حل پذيري هوندي آهي ۽ آزاد ڌاتو آئن اينهائيڊروس ايٿانول ۾ حل پذير هوندا آهن، اينهائيڊروس ايٿانول ۾ ٻنهي جي وچ ۾ حل پذيري ۾ فرق کي امينو ايسڊ آئرن ڪمپليڪس جي چيليشن جي شرح کي طئي ڪرڻ لاءِ استعمال ڪيو ويو. |
| فارمولا ۾: V1 - ٽيسٽ محلول جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ سيريم سلفيٽ معياري محلول جو مقدار، mL؛ | اينهائيڊروس ايٿانول؛ باقي GB/T 27983-2011 ۾ شق 4.5.2 وانگر ساڳيو آهي. | 3. تجزيو جا مرحلا |
| متوازي طور تي ٻه آزمائشون ڪريو. 0.1 گرام نموني جو وزن 103±2℃ تي 1 ڪلاڪ لاءِ خشڪ ڪيو، 0.0001 گرام تائين درست، 100 ملي ليٽر اينهائيڊروس ايٿانول شامل ڪريو ته جيئن ان کي حل ڪري سگهجي، فلٽر ڪريو، گهٽ ۾ گهٽ ٽي ڀيرا 100 ملي ليٽر اينهائيڊروس ايٿانول سان ڌوئڻ واري باقيات کي فلٽر ڪريو، پوءِ باقيات کي 250 ملي ليٽر مخروطي فلاسڪ ۾ منتقل ڪريو، GB/T27983-2011 ۾ شق 4.5.3 جي مطابق 10 ملي ليٽر سلفرڪ ايسڊ محلول شامل ڪريو، ۽ پوءِ شق 4.5.3 جي مطابق هيٺيان قدم کڻو "حل ڪرڻ لاءِ گرم ڪريو ۽ پوءِ ٿڌو ٿيڻ ڏيو" GB/T27983-2011 ۾. ساڳئي وقت خالي ٽيسٽ ڪريو. | 4. ڪل لوھ جي مقدار جو تعين | 4.1 تعين جو اصول GB/T 21996-2008 ۾ شق 4.4.1 وانگر ساڳيو آهي. |
4.2. ريجنٽس ۽ حل
| 4.2.1 ملايل تيزاب: 700 ملي ليٽر پاڻي ۾ 150 ملي ليٽر سلفيورڪ ايسڊ ۽ 150 ملي ليٽر فاسفورڪ ايسڊ شامل ڪريو ۽ چڱي طرح ملايو. | 4.2.2 سوڊيم ڊفينيلامائن سلفونيٽ انڊيڪيٽر محلول: 5 گرام/ليٽر، GB/T603 مطابق تيار ڪيل. | 4.2.3 سيريم سلفيٽ معياري ٽائيٽريشن محلول: ڪنسنٽريشن c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L، GB/T601 مطابق تيار ڪيل. | |
| 4.3 تجزيو جا مرحلا | متوازي طور تي ٻه آزمائشون ڪريو. 0.1 گرام نموني جو وزن ڪريو، 020001 گرام تائين صحيح، 250 ملي ليٽر مخروطي فلاسڪ ۾ رکو، 10 ملي ليٽر مخلوط تيزاب شامل ڪريو، حل ٿيڻ کان پوءِ، 30 ملي ليٽر پاڻي ۽ سوڊيم ڊائنائلين سلفونيٽ انڊيڪيٽر محلول جا 4 قطرا شامل ڪريو، ۽ پوءِ GB/T21996-2008 ۾ شق 4.4.2 جي مطابق هيٺيان قدم کڻو. ساڳئي وقت خالي ٽيسٽ ڪريو. | 4.4 نتيجن جي نمائندگي | امينو ايسڊ آئرن ڪمپليڪس جي ڪل لوھ جي مقدار X1 لوھ جي ماس فريڪشن جي لحاظ کان، % ۾ ظاهر ڪيل قدر، فارمولا (1) جي مطابق ڳڻپيو ويو: |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - خالي محلول جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ سيريم سلفيٽ معياري محلول، mL؛ | V0 - خالي محلول جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ سيريم سلفيٽ معياري محلول، mL؛ | سي - سيريم سلفيٽ جي معياري محلول جي اصل ڪنسنٽريشن، mol/L5. چيليٽس ۾ لوھ جي مقدار جو حسابچيليٽ ۾ لوهه جو مواد X2 لوهه جي ماس فريڪشن جي لحاظ کان، % ۾ ظاهر ڪيل قدر، فارمولا جي مطابق حساب ڪيو ويو: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| فارمولا ۾: V1 - ٽيسٽ محلول جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ سيريم سلفيٽ معياري محلول جو مقدار، mL؛ | V2 - خالي محلول جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ سيريم سلفيٽ معياري محلول، mL؛nom1-نموني جو ماس، g. متوازي تعين جي نتيجن جي رياضي جي اوسط کي تعين جي نتيجن طور وٺو، ۽ متوازي تعين جي نتيجن جو مطلق فرق 0.3٪ کان وڌيڪ نه آهي. | 0.05585 - فيرس لوھ جو وزن گرام ۾ ظاهر ڪيو ويو آهي جيڪو 1.00 ايم ايل سيريم سلفيٽ معياري محلول C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L جي برابر آهي.nom1-نموني جو ماس، g. متوازي تعين جي نتيجن جي رياضي جي اوسط کي تعين جي نتيجن طور وٺو، ۽ متوازي تعين جي نتيجن جو مطلق فرق 0.3٪ کان وڌيڪ نه آهي. | 6. چيليشن جي شرح جو حسابچيليشن جي شرح X3، % ۾ ظاهر ڪيل قدر، X3 = X2/X1 × 100ضميمه سي: زينپرو جي چيليشن جي شرح جي تعين لاءِ طريقا |
معيار کي اپنائڻ: Q/320205 KAVNO7-2016
1. ريجنٽ ۽ مواد
الف) برفاني ايسٽڪ ايسڊ: تجزياتي طور تي خالص؛ ب) پرڪلورڪ ايسڊ: 0.0500mol/L؛ ج) اشارو: 0.1٪ ڪرسٽل وائلٽ اشارو (گليشيئر ايسٽڪ ايسڊ)
2. مفت امينو ايسڊ جو تعين
2.1 نمونن کي 80 ° C تي 1 ڪلاڪ لاءِ خشڪ ڪيو ويو.
2.2 نموني کي خشڪ ڪنٽينر ۾ رکو ته جيئن قدرتي طور تي ڪمري جي حرارت تي ٿڌو ٿئي يا استعمال لائق درجه حرارت تي ٿڌو ٿئي.
2.3 تقريبن 0.1 گرام نموني جو وزن (0.001 گرام تائين صحيح) هڪ 250 ايم ايل خشڪ مخروطي فلاسڪ ۾ ڪريو.
2.4 نموني کي ماحول جي نمي جذب ڪرڻ کان بچائڻ لاءِ جلدي ايندڙ قدم تي اڳتي وڌو.
2.5 25 ملي ليٽر گليشيل ايسٽڪ ايسڊ شامل ڪريو ۽ 5 منٽن کان وڌيڪ نه چڱي طرح ملايو.
2.6 ڪرسٽل وايوليٽ انڊيڪيٽر جا 2 ڦڙا شامل ڪريو.
2.7 پرڪلورڪ ايسڊ جي 0.0500mol/L (±0.001) معياري ٽائيٽريشن محلول سان ٽائيٽريٽ ڪريو جيستائين محلول 15 سيڪنڊن لاءِ جامني کان سائي ۾ تبديل نه ٿئي بغير آخري نقطي طور رنگ تبديل ڪرڻ جي.
2.8 استعمال ٿيل معياري محلول جي مقدار کي رڪارڊ ڪريو.
2.9 ساڳئي وقت خالي ٽيسٽ ڪريو.
- 3. حساب ۽ نتيجا
- قيطلوني
- Physicochemical parameters
V1 - معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول سان نمونن جي ٽائيٽريشن لاءِ استعمال ٿيندڙ حجم، ملي ليٽر (mL) ۾.
Vo - معياري پرڪلورڪ ايسڊ محلول سان ٽائيٽريشن بلينڪ لاءِ استعمال ٿيندڙ حجم، ملي ليٽر (mL) ۾؛
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
پتو: نمبر 147 چنگپو روڊ، شوان ٽائون، پوجيانگ ڪائونٽي، چينگدو سٽي، سيچوان صوبو، چين
فون: 86-18880477902
مصنوعات
غير نامياتي ٽريس معدنيات
- نامياتي ٽريس معدنيات
- سواهلي
- ڪسٽمائيز سروس
- جلدي لنڪس
ڪمپني پروفائل
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| گجراتي | پڇا ڳاڇا لاءِ ڪلڪ ڪريو | © ڪاپي رائيٽ - 2010-2025: سڀ حق محفوظ آهن. | سائيٽ ميپ مٿي ڳولا فون |
| ٽيليفون | 86-18880477902 | جاواني | اي ميل واٽس ايپ |
| 8618880477902 | چيني | فرانسي | |
| Bird | چيني | فرانسي | جرمني اندلسي |
| Aquatic animals | جاپاني | ڪورين | عربي يوناني |
| ترڪي | اطالوي | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | انڊونيشي آفريڪي سويڊني |
پالش
- بسڪاني
- قيطلوني
- Physicochemical parameters
هندي
لائو
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
شونا
بلغاريائي
- سيبوانو
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- ڪروشيائي
ڊچ ٻولي
| Application object | اردو ويٽنامي | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| گجراتي | هيٽيائي | هوسا ٻولي | ڪينياروانڊا همنگي هنگري |
| Piglets and fattening pigs | اِگبو | جاواني | ڪنادي خمير ڪردي |
| ڪرغيز | لاطيني | ||
| Bird | 300~400 | 45~60 | مقدوني مالائي مالايالم |
| Aquatic animals | 200~300 | 30~45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
نارويجي
- پشتو
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
سربيائي
سيسوٿو
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
شونا
سنڌي
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
سواهلي
تاجڪ
تاملي
تيلوگو ٻولي
ٿائي ٻولي
| Application object | اردو ويٽنامي | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| يدش | يوروبا | زولو | ڪينياروانڊا اوريائي ترڪماني |
| يوغور | 250~400 | 37.5~60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300~400 | 45~60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200~300 | 30~45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100~250 | 15~37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250~350 | 37.5~52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100~200 | 15~30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides(180-500) | Zinpro's products | Proportion of small peptides(180-500) |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025